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植物组织培养,目 录,绪论第一章 实验设备及技术第二章 外植体的选择及灭菌第三章 外植体的接种培养及驯化第四章 愈伤组织的培养第五章 器官和体细胞胚的发生第六章 植物快繁与脱毒,绪 论,植物组织培养是二十世纪发展起来新技术，近几十年来，由于组培基础理论的研究深入，发展极为迅速，几乎以植物为研究对象的各个分支学科都在广泛进行组培。定义：是指植物的任何器官、组织或细胞，在人工预知的控制条件下，放在含有营养物质和植物生长调节物质等组成的培养基中，使其生长、分化形成完整植株的过成。,一、植物组织培养的分类及相关概念,1 根据培养的对象不同，可分为：器官培养（organ culture）组织培养（meristem culeure）胚胎培养（embryoid culeure）细胞培养（cell culeure）原生质体培养（protoplast culeure）,2 根据培养过程不同，分为 初代培养（primary culture）继代培养（subculture）3 根据培养基物理状态，分为 固体培养（solid culture）液体培养（liquid culture）,4 相关概念（1）外植体（explant）：由活体（in vivo）上提取下来的，接种在培养基上的无菌细胞、组织、器官等。（2）愈伤组织（callus）：在人工培养基上由外植体形成的一团无序生长状态的薄壁细胞。（3）分化（differentiation）：指由受精卵经细胞分裂，引起极性生长发育成种子，经根、茎、叶生长，开花结实，形成完整植株。,（4）脱分化（dedifferentiation）：由高度分化的植物组织或器官产生无分化状态的愈伤组织的过程。（5）再分化（redifferentiation）：将脱分化形成的愈伤组织转移到适当的培养基上继续培养，这些无定形的愈伤组织又会重新分化出根、茎、叶的完整植株的过程。,二、植物组织培养的理论依据及特点,（一）理论依据 植物细胞的全能性（totipotency）：是指植物体任何一个细胞都携带着一套发育成完整植株的全部遗传信息，在离体培养条件下，这些信息可以表达，产生出完整植株。,原理：生物体的每一个细胞都包含有该物种所特有的全套遗传物质，都有发育成为完整个体所必须的全套基因，从理论上讲，生物体的每一个活细胞都应该具有全能性。差异：（1）受精卵的全能性最高（2）受精卵分化后的细胞中，体细胞的全能性比生殖细胞低。,潜在全能性的原因：基因表达的选择性科学研究表明：处于离体状态的植物活细胞，在一定的营养物质，激素和其他外界条件的作用下，就可能表现出全能性，发育成完整植株。人工条件下实现的这一过程，就是植物的组织培养。要使细胞全能性表达出来，形成完整植株，除了生长以外，还要经过分化、脱分化和再分化等过程。,在正常情况下：受精卵分裂、分化种子萌发 完整植株（具有根、茎、叶、花、果实）在离体条件下：离体组织、器官（在培养基上）细胞分裂（脱分化）愈伤组织 再分化 完整植株（具有根、茎、叶、花、果实）,（二）植物组织培养过程：植物体（分离）外植体（脱分化）愈伤 组织（再分化）生长点 完整植株（具有 幼根、幼茎）,（三）植物组织培养条件：含有全部营养成分的培养基、一定的温度、空气、无菌环境、适合的PH、适时的光照。（四）离体器官的分化方式主要有三种；1、由分生组织直接分生芽 2、由分生组织形成愈伤组织，经过再分化形成完整植株实现细胞全能性。3、由游离的细胞或原生质体形成胚状体（embryoid），直接重建完整植株，或制成人工种子后重建植株,（五）植物组织培养的特点 1、优越性：可以在不受植物体其他部分干扰的情况下研究被培养部分（外植体）的生长和分化规律。2、特点：（1）取材少，培养材料经济（2）人为控制培养条件，不受自然条件影响。（3）生长周期短，繁殖率高，（4）管理方便，利于自动化控制,3、重要性：（1）理论上：是研究细胞学、遗传学、育种学、生物化学和药物学等学科的重要手段。（2）生产上：在农学、园艺、林业和次生代谢物工程等生产领域得到广泛应用。,三、植物组织培养的发展历史,1902年，德国植物学家Haberlandt提出细胞全能性的概念。1904年，E.Hanning 培养萝卜和辣根菜属的一种植物的胚，使其发育成熟。1908年，S.simon 研究培养白杨嫩茎，观察到愈伤组织的发生和根芽的形成。1958年，美国科学家Steward等和德国Reinert分别用胡萝卜根细胞诱导形成胚状体，使细胞全能性得到证实，为组织培养技术程序奠定了基础。,1960年，E.C.cocking采用纤维素酶,果胶酶等酶制剂分离番茄幼根，获得大量健康的原生质体。1962年，Murashige和Skoog在烟草培养中筛选出至今仍然被广泛使用的MS培养基。1964年，印度科学家S.Guha和 Msheshwari培养南洋金花未成熟的花药时，发现了由大量胚状体形成的小植株（单倍体植株）。罗士韦是我国植物组织和细胞培养研究的开拓者和奠基人之一。在30年代即开始离体根的培养，随着又进行幼胚和茎尖的培养。,70年代初期开始，我国掀起了单倍体育种的高潮，在小麦、水稻、烟草、玉米、三叶橡胶等作物上取得了一批有意义的成果。80-90年代，全国研究工作内容明显倾向无性系的快速繁殖，许多机构开始转向应用，成为生产实体，如甘蔗、草莓、葡萄、菠萝、香蕉，各色观赏植物等。现在，我国在原生质体培养，体细胞杂交、突变体筛选、去除病毒、次生代谢物的发酵生产、人工包装超级种子等方面都有了进步。,四、植物组织培养的应用,1、快速繁殖：运用组织培养途径，一个植株一年可以繁殖几万到几百万个植株，例如，一株葡萄一年繁殖3万多株，一株兰花一年繁殖到400万株。2、种苗脱毒：针对病毒对农作物造成的严重危害，通过组织培养可以有效地培育出大量的无病毒种苗，已经取得的有马铃薯、草莓、香蕉、葡萄等。,3、远缘杂交：利用组织培养可以使难度很大的远缘杂交取得成功，从而育成一些罕见的新物种。比如辽宁果树研究所利用这一方法获得了苹果与梨的杂交种。4、突变育种：采用组织培养可以直接诱变和筛选出具抗病毒、抗盐、高赖氨酸、高蛋白等优良性状的品种。象中国林科院用逐步加大培养基中盐的浓度，直接获得耐盐的杨树株系。,5、基因工程：基因工程主要研究DNA的转导，而基因转导后，必须通过组织培养途径才能实现植株再生。6、生物制品：有些极其昂贵的生物制品，比如抗癌首选药物紫杉醇等，可以用大规模培养植物细胞来直接生产。,第一章 实验设备及技术,在进行植物组织培养工作之前，首先对工作中需要哪些最基本的设备条件有个全面了解，以便因地制宜地利用现有房屋，或新建、改建实验室。实验室的大小取决于工作的目的和规模。以工厂化生产为目的，实验室规模太小，则会限制生产，影响效率。在设计组织培养实验室时，应按组织培养程序来设计，避免某些环节倒排，引起日后工作混乱。,第一节 实验室,植物组织培养是在严格的无菌的条件下进行的，要做到无菌的条件，需要一定的设备、器材和用具，同时还需要人工控制温度、光照、湿度等培养条件。1、实验室设计原则：保证无菌操作，达到工作方便，防止污染。2、实验室组成：化学实验室、洗涤菌室、无菌操作室（接种室）、培养室、细胞学实验室。,化学实验室（准备室）：完成所使用的各种药品的贮备、称量、溶解、配制、培养基分装等。主要设备：药品柜、防尘橱（放置培养容器）、冰箱、天平、蒸馏水器、酸度计及常用的培养基配制用玻璃仪器。洗涤、灭菌室：完成各种器具的洗涤、干燥、保存、培养基的灭菌等。主要设备：水池、操作台、高压灭菌锅、干燥灭火器（如烘箱）等。,无菌操作室（接种室）：主要用于植物材料的消毒、接种、培养物的转移、试管苗的继代、原生质体的制备以及一切需要进行无菌操作的技术程序。主要设备：紫外光源、超净工作台、消毒器、酒精灯、接种器械（接种镊子、剪刀、解剖刀、接种针）等。接种室宜小不宜大，一般78平米，要求地面、天花板及四壁尽可能密闭光滑，易于清洁和消毒。配置拉动门，以减少开关门时的空气扰动。,接种室要求干爽安静，清洁明亮，在适当位置吊装12盏紫外线灭菌灯，用以照射灭菌。最好安装一小型空调，使室温可控，这样可使门窗紧闭，减少与外界空气对流。接种室应设有缓冲间，面积为1m为宜。进入无菌操作室前在此更衣换帽，以减少进出时带入接种室杂菌。缓冲间最好也安装一盏紫外线灭菌灯，用以照射灭菌。,培养室：培养室是将接种的材料进行培养生长的场所。培养室可根据需要培养架的大小、数目、及其他附属设备而定。其设计以充分利用空间和节省能源为原则。高度比培养架略高为宜，周围墙壁要求有绝热防火的性能。培养材料放在培养架上培养。培养架大多有金属制成，一般设5层，最低一层离地面高约10cm，其他每层间隙30cm左右，培养架即高1.7m左右。培养架的长度是根据日光灯的长度而设计的，如采用40W的日光灯，则长1.3m，30W的长度为1m，宽度为60cm。,培养室最重要的因子是温度，一般保持在2027C左右，具备产热装置，并安装窗式或立式空调机。由于热带植物和寒带植物等不同种类要求不同温度，最好不同种类有不同的培养室。室内温度也要求恒定，相对湿度以保持在70%80%为好，可安装加湿器。控制光照时间可安装定时开关钟，一般需要每天光照1016小时，也有的需要连续照明。短日照植物要求短日照条件，长日照植物要求长日照条件。,现代组培实验室大多设计为采用天然太阳能作为主要能源，这样不但可以节省能源，而且组培苗接受太阳光生长良好，驯化易成活。在阴雨天可用灯光作补充。主要设备：培养架（控温控光控湿）、摇床、培养箱、紫外光源等。,细胞学实验室：用于培养物的观察分析与培养物的记数等。主要设备：双筒实体显微镜、显微镜、倒置显微镜。其他小型仪器设备：分注器、血球计数器、移液器、过滤灭菌器、电炉等加热器具、磁力搅拌器、低速台式离心机等。,第二节 植物组织培养的 培养条件,一、营养条件培养基（culture medium）培养基：是植物组织培养的重要基质。在离体培养条件下，不同种植物的组织对培养有不同的要求，甚至同一种植物不同部位的组织对营养的要求也不相同，只有满足了它们各自的特殊要求，它们才能很好地生长。因此，没有一种培养基能够适合一切类型的植物组织或器官，,在建立一项新的培养系统时，首先必须找到一合适的培养基，培养才能成功。培养基的种类 培养基有许多种类，根据不同的植物和培养部位及不同的培养目的须选用不同的培养基。培养基的产生，最早是Sacks（1680）和Knop（1681），他们对绿色植物的成分进行了分析研究，根据植物从土中主要是吸收无机盐营养，设计出了由无机盐组成的Sacks和Knop溶液，至今仍在作为基本的无机盐培养基得到广泛应用。,以后根据不同目的进行改良产了许多培养基，White培养基在40年代用得最多，现在还常用。而到60-70年代则大多采用MS等高浓度培养基，可以保证培养材料对营养的需要，并能生长快、分化快，且由于浓度高，在配制、消毒过程中某些成分有些出入，也不致影响培养基的离子平衡。培养基的名称，一直根据沿用的习惯。多数以发明人的名字命名，如White培养基，Murashige和Skoog培养基（MS培养基），也有对某些成分进行改良的改良,培养基。目前国际上流行的培养基有几十种，常用的培养基及特点如下：（1）MS培养基：它是1962年由Murashige和Skoog为烟草细胞而设计的。特点是无机盐和离子浓度较高，为较稳定的平衡溶液。其养分的数量和比例较合适，可满足植物的营养和生理需要。它的硝酸盐含量较其他培养基为高，广泛用于植物的器官、花药、细胞和原生质体培养效果良好。有些培养基是由它演变而来。,（2）B5培养基：是1968年由Galmborg等为培养大豆而设计的。其主要特点是含有较低的铵，这可能对不少培养物的生长有抑制作用。从实践得知有些植物在B5培养基上生长更适宜，如双子叶植物特别是木本植物。（3）White培养基：是1943年由White为培养番茄根尖而设计的。1963年又作了改良，称作White改良培养基，提高了MeSo4的浓度和增加了硼素。其特点是无机盐数量较低，适于生根培养。,（4）N6培养基：是1974年朱至清等为水稻等禾谷类作物花药培养而设计的。其特点是成分较简单，KNO3和（NH4）2SO4 的含量高。在国内已广泛应用于小麦、水稻及其他植物的花药培养基和其他组织培养。（5）KM8P培养基：它是1974年为原生质体培养而设计的。其特点是有机成分较复杂，它包含了所有的单糖和维生素，广泛用于原生质体融合的培养。,培养基的成分主要可以分为水、无机盐、有机物、天然复合物、培养体的支持材料等五大类。水（H2o）是植物原生质体的组成成分，也是一切代谢过程的介质和溶液。它是生命活动过程中不可缺少的物质。配制培养基母液时要用蒸馏水，以保持母液及培养基成分的精确性，防止贮藏过程发霉变质。大规模生产时可用自来水。但在少量研究上尽量用蒸馏水，以防成分的变化引起不良效果。,无机元素（inorganic element）大量元素：指浓度大于0.5/L的元素等，其作用是：（1）N 是蛋白质、酶、叶绿素、维生素、核酸、磷脂、生物碱等的组成成分。是生命不可缺少的物质。在制备培养基时以NO3N和NH4N两种形式供应。大多数培养基既含有NO3N又含有NH4 N。NH4N对植物生长较为有利。供应的物质有KNO3、NH4NO3等。也添加氨基酸来补充氮素。（2）P 是磷脂的主要成分，而磷脂又是,原生质、细胞核的重要组成部分。磷也是ATP、ADP等的组成成分。在植物培养过程中，向培养基内添加磷、不仅增加养分、提供能量，而且也促进对N的吸收，增加蛋白质在植物体中的积累。常用的物质有KH2PO4或NaH2PO4等。（3）K 对碳水化合物合成、转移、以及氮素代谢等密切关系。K增加时，蛋白质合成增加，维管束、纤维组织发达，对胚的分化有促进作用。但浓度不易过大，一般为13mg/L为好。制备培养基时，常以KCL、KNO3等盐类提供。,（4）Mg、S和Ca、Mg是叶绿素的组成成分，又是激酶的活化剂；S是氨基酸和蛋白质的组成成分。它们常以MgSO47H2O提供。用量为1-3mg/l较为适宜；Ca是构成细胞壁的一种成分，Ca对细胞分裂、保护质膜不受破坏有显著作用，常以CaCl2H2O提供。,微量元素指小于0.5mmol/L的元素，Fe，B，Mn，Cu，Mo，Co等。铁是一些氧化酶、细胞色素氧化酶、过氧化氢等酶的组成成分。同时，它又是叶绿素形成的必要条件。培养基中铁对胚的形成、芽的分化和幼苗转绿有促进作用。在制作培养基时不用FeSO4和FeCl3（因其在PH值5.2以上，易形成Fe(OH)3的不溶性沉淀），而使用FeSO47H2O和NaEDTA的结合成的结合物。B，Mn，Zn，Cu，Mo，Co等，也是植物组织培养中不可缺少的元素，缺少这些物质会导致生长、发育异常现象。,有机化合物（organic compound）培养基中只含有大量元素与微量元素，常称为基本培养基（basic medium）。为不同的培养目的往往要加入一些有机物以利于快速生长。常加入的的有机成分要以下几类：,碳水化合物：最常用的碳源是蔗糖，葡萄糖和果糖也是较好的碳源，可支持许多组织很好生长。麦芽糖、半乳糖、甘露糖和乳糖在组织培养中也有应用。蔗糖使用浓度在2%3%，常用3%，即配制一升培养基称取30g蔗糖，有时可用2.5%。但在胚培养时采用4%15%的高浓度，因蔗糖对胚状体的发育起重要作用。不同糖类对生长的影响不同。从各种糖对水稻根培养的影响来看，以葡萄糖效果最好，果糖和蔗糖相当，麦芽糖差一些。不同植物不同组织的糖类需要量也不同，实验时要根据配方规定按量称取，不能任意取量。高压灭菌时，一部分糖会发生分解，制订配方时要给予考虑。在大规模生产时，可用食用的棉白糖代替。,维生素（vitamin）：这类化合物在植物细胞里主要是以各种辅酶的形式参与多种代谢活动，对生长、分化等有很好的促进作用。虽然大多数的植物细胞在培养基中都能合成所必须的维生素，但在数量上还明显不足，通常需要加入一至数种维生素，以便获得最良好的生长。主要有VB(盐酸硫胺素)、VB6(盐酸吡多醇)、VPP(烟酸)、VC(抗坏血酸)，有时还使用生物素、叶酸、VB12等。一般用量为0.11.0mg/L。有时用量较高。VB1对愈伤组织的产生和生活力有重要作用，VB6能促进根的生长，VPP与植物代谢和胚的发育有一定关系。VC有防止组织变褐的作用。,肌醇（myoinosltol）：又叫环己六醇，在糖类的转化中起重要作用。通常可由磷酸葡萄糖转化而成，还可进一步生成果胶物质，用于构建细胞壁。肌醇与6分子磷酸残基相结合形成植酸，植酸与钙、镁等阳离子结合成植酸钙镁，植酸可进一步形成磷脂，参与细胞膜的构建。使用浓度一般为100mg/L，适当使用肌醇，能促进愈伤组织的生长以及胚状体和芽的形成。对组织和细胞的繁殖、分化有促进作用，对细胞壁的形成也有作用。,氨基酸（almino acide）：是很好的有机氮源，可直接被细胞利用。培养基中最常用的氨基酸是甘氨酸，其他的如精氨酸、谷氨酸、谷酰胺、天冬氨酸、天冬酰胺、丙氨酸等也常用。有时应用水解乳蛋白或水解酪蛋白，它们是牛乳用酶法等加工的水解物，是含有20种氨基酸的混合物，用量在10-100mg/L之间。由于它们营养丰富，极易引起污染。如在培养中无特别需要，以不用为宜。,天然复合物天然复合物的成分比较复杂，大多含氨基酸、激素、酶等一些复杂化合物。它对细胞和组织的增殖与分化有明显的促进作用，它对器官的分化作用不明显。它的成分大多不清楚，所以一般应尽量避免使用。,椰乳：是椰子的液体胚乳。它是使用最多，效果最大的一种天然复合物，一般使用浓度在10%-20%，与其果实成熟度和产地关系也很大，它在愈伤组织和细胞培养中有促进作用。在马铃薯茎尖分生组织和草莓微茎尖培养中起明显的促进作用。香蕉：用量为150-200ml/L。用黄熟的小香蕉，加入培养基后变紫色。对PH值缓冲作用大。主要在兰花的组合培养中应用，对发育有促进作用。,马铃薯：去掉皮和芽后，加水煮30min，再经过滤，取滤液使用。用量为150-200g/L。对PH值缓冲作用大。添加后可得到健壮的植株。水解酪蛋白：为蛋白质的水解物，主要成分为氨基酸，使用浓度为100200mg/L，受酸和酶的作用易分解，使用时应注意。其他：酵母提取液(YE)(0.01%-0.05%).主要成分为氨基酸和维生素类；麦芽提取液（0.01%-0.5%）、苹果和番茄的果汁、黄瓜的果实、未熟的玉米胚乳等。遇热较稳定，大多在培养困难时使用。,植物生长调节物质（hormone）植物激素是植物新陈代谢中产生的天然化合物，它能以极微小的量影响到植物的细胞分化、分裂、发育，影响到植物的形态建成、开花、结实、成熟、脱落、衰老和休眠以及萌发等许许多多的生理生化活动，在培养基的各种成分中，植物生长物质是培养基的关键物质，对植物组织培养起着决定性作用。,1）生长素类（auxin）：在组织培养中，生长素主要被用于诱导愈伤组织形成，诱导根的分化和促进细胞分裂、伸长生长。在促进生长方面，根对生长素最敏感。在极低的浓度下（10-510-8mg/L）就可促进生长，其次是茎和芽。天然的生长素热稳定性差，高温高压或受光条件易被破坏。在植物体内也易受体内酶的分解，组织培养中常用人工合成的生长素类物质。,IBA（indolebutyri acid 吲哚丁酸）：是促进发根能力较强的生长调节物质。2，4D（2，4二氯苯氧乙酸）启动能力比IAA高10倍，特别在促进愈伤组织的形成上活力最高，但它强烈抑制芽的形成，影响器官的发育，适宜的用量范围较窄，过量常有毒效应。,IAA（indo acetic acid 吲哚乙酸）：是天然存在的生长素，亦可人工合成，其活力较低，是生长素中活力最弱的激素，对器官形成的副作用小。高温高压易被破坏，也易被细胞中的IAA分解酶降解，受光也易分解。NAA（naphthalene acetic acid 萘乙酸）：在组织培养中的启动能力要比IAA高出3-4倍，且由于可大批量人工合成，耐高温高压，不易被分解破坏，所以应用较普遍。NAA和IBA广泛应用于生根，并与细胞分裂素互作促进芽的增殖和生长。,2）细胞分裂素类（cytokinin）：这类激素是腺嘌呤的衍生物，包括6-BA（6-苄基氨基嘌呤）、Kt（kinetin 激动素）、Zt（zeatin 玉米素）等。其中Zt活性最强，但非常昂贵，常用6-BA。在培养基中添加细胞分裂素有三个作用（1）诱导芽的分化，促进侧芽萌发生长（2）促进细胞分裂与扩大（3）抑制根的分化。因此，细胞分裂素多用于诱导不定芽的分化和茎、苗的增殖，而在生根培养中使用较少或用量较低。,3）GA（gibberellic acid 赤霉素）：有二十多种，生理活性及作用的种类、部位、效应等各有不同、培养基中添加的是GA3，主要是促进幼苗茎的伸长生长，促进不定胚发育成小植株；赤霉素和生长素协同作用，对形成层的分化有影响，当生长素/赤霉素比值高时有利于木质部分化，比值低时有利于韧皮部分化：此外，赤霉素还用于打破休眠，促进种子、块茎、鳞茎等提前萌发。一般在器官形成后，添加赤霉素可促进器官或胚状体的生长。,激素配比模式生长素与细胞分裂素的比例决定着发育的方向，是愈伤组织、长根还是长芽。如为了促进芽器官的分化，应除去或降低生长素浓度，或调整培养基中生长素与细胞分裂素的比例。高 有利于根和愈伤组织形成生长素/细胞分裂素 中 有利于芽的分化 低 有利于芽的形成,生长调节物质的使用甚微，一般用mg/L表示浓度。在组织培养中生长调节物质的使用浓度，因植物的种类、部位、时期、内源激素等的不同而异，一般生长素浓度的使用为0.05%-5mg/L，细胞分裂素的浓度0.05-10mg/L。,抗生物质（antibiotic）抗生物质有青霉素、链霉素、庆大霉素等，用量在5-20mg/L之间。添加抗生物质可防止菌类污染，减少培养中材料的损失，尤其是快速繁殖中，常因污染而丢弃成百上千瓶的培养物，采用适当的抗生素便可节约人力、物力和时间。尤其对大量通气长期培养，效果好。对于刚感染的组织材料，可向培养基中注入5%-10%的抗菌素。抗生素各有其抗菌谱，要选择加以利用，也可两种抗生素混用。,但是应当注意抗生素对植物组织的生长也有抑制作用，可能有些植物适宜用青霉素，而另一些植物却不适应。值得一提的是，在工作中不能以为有了抗生素，而放松灭菌措施，此外，在停止抗生素使用后，往往污染率显著上升，这可能是原来受抑制的菌类又滋生起来。,活性碳（active carbon）活性炭为木炭粉碎经加工形成的粉末结构，它结构疏松，孔隙大，吸水力强，有很强的吸附作用，它的颗粒大小决定着吸附能力、粒度越小，吸附力越强。温度低吸附力强，温度高吸附力弱，甚至解吸附。通常使用浓度为0.510g/L。它可以吸附非极性物质和色素等大分子物质，包括琼脂中所含的杂质，培养物分泌的酚、琨类物质以及蔗糖在高压消毒只产生的5羟甲基糖醛及激素等。,活性炭作用：茎尖初代培养，可以吸附外植体产生的致死性褐化物。活性炭在生根时有明显促进作用。其机理一般认为与活性炭减弱光照有关。在培养基中加入0.3%的活性炭，还可降低玻璃苗的产生频率。活性炭在胚胎培养中也有一定作用，可减少组织变褐和培养基变色，产生较少的愈伤组织。但是，活性炭有副作用，研究表示，每毫克活性炭吸附100mg左右的生长调节物质，这说明,只要极少量的活性炭就可以完全吸附培养基的调节物质。大量活性炭加入会削弱琼脂的凝固能力，因此要多加一些琼脂。很细的活性炭也易沉淀，通常在琼脂凝固之前，要轻轻摇动培养瓶。总之，在使用时要有量的意识，不能随意添加，使活性炭发挥其积极作用。,二.培养材料的支持物琼脂（agar）：在固体培养时琼脂是最好的固化剂。琼脂是一种由海藻中提取的高分子碳水化合物，本身并不提供任何营养。琼脂能溶解在热水中，成为溶胶，冷却至40C即凝固为固体溶胶。通常所说的“煮化”培养基，就是使琼脂溶解于90C以上的热水。琼脂的用量在6-10g/L之间，若浓度太高，培养基就会变得很硬，营养物质难以扩散到培养的组织中去。若浓度太低，凝固性不好。新买来的琼脂最好先试一下它的凝固力。一般,琼脂以颜色浅、透明度好、洁净的为上品。琼脂的凝固能力除与原料、厂家的加工方式有关外，还与高压灭菌时的温度、时间、PH值等因素有关。长时间的高温会使凝固力下降，过酸过碱会加之高温会使琼脂发生水解，丧失凝固力。时间过久，琼脂变褐，也会逐渐丧失凝固能力。,三、环境条件 在植物组织培养中温度、光照、湿度等各种环境条件，培养基组成、pH值、渗透压等各种化学环境条件都会影响组织培养育苗的生长和发育。,温度(temperature),因为温度是植物组织培养中的重要因素，所以植物组织培养在最适宜的温度下生长分化才能表现良好，大多数植物组织培养都是在2327之间进行，一般采用25 2。低于15时培养，植物组织会表现生长停止，高于35时对植物生长不利。但是，不同植物培养的适温不同，百合的最适温度是20、月季足25-27、番茄是28。温度不仅影响植物组织培养育苗的生长速度，也影响其分化增殖以及器官建成等发育进程。如烟草芽的形成以28为最好，在120以下，33以上形成率皆最低。,不同培养目标采用的培养温度也不同，百合鳞片在30以下再生的小鳞茎的发叶速度和百分率都比在25以下的高。桃胚在25条件进行一定时间的低温处理，有利于提高胚培养成活率。用35处理草莓的茎尖分生组织35d，可得到无病毒苗。,光 照(light),组织培养中光照也是重要的条件之一，主要表现在光强、光质、以及光照时间方面 1光照强度(light intensity)光照强度对培养细胞的增殖和器官的分化有重要影响，从目前的研究情况看，光照强度对外植体及细胞的最初分裂有明显的影响。一般来说，光照强度较强，幼苗生长的粗壮，而光照强度较弱幼苗容易徒长。2光质(light wave)光质对愈伤组织诱导，培养组织的增殖以及器官的分化都有明显的影响。如百合珠芽在红光下培养，8周后，分化出愈伤组织。生长旺盛，而白光下幼苗纤细。,但在蓝光下培养，几周后才出现愈伤组织，而唐菖蒲子球块接种15d后，在蓝光下培养首先出现芽，形成的幼苗3光周期(light period)试管苗培养时要选用一定的光暗周期来进行组织培养，最常用的周期是16h的光照，8h的黑暗。研究表明，对短日照敏感的品种的器官组织，在短日照下易分化，而在长日照下产生愈伤组织，有时需要暗培养，尤其是一些植物的愈伤组织在暗下比在光下更好。如红花、乌饭树的愈伤组织,湿度(humidity),湿度的影响包括培养容器保持和环境的湿度条件，容器内主要受培养基水分含量和封口材料的影响。前者又受琼脂含量的影响。在冬季应适当减少琼脂用量，否则，将使培养基干硬，以致不利于外植体接触或插进培养基，导致生长发育受阻。封口材料直接影响容器内湿度情况，但封闭性较高的封口材料易引起透气性受阻，也会导致植物生长发育受影响。,环境的相对湿度可以影响培养基的水分蒸发，一般要求70%80%的相对湿度，常用加湿器或经常洒水的方法来调节湿度。湿度过低会使培养基丧失大量水分，导致培养基各种成分浓度的改变和渗透压的升高，进而影响组织培养的正常进行。湿度过高时，易引起棉塞长霉，造成污染。,渗透压(penetrating pressure),培养基中由于有添加的盐类、蔗糖等化合物，因此，而影响到渗透压的变化。通常12个大气压对植物生长有促进作用，2个大气压以上就对植物生长有阻碍作用，而56个大气压植物生长就会完全停止，6个大气压植物细胞就不能生存。,pH值(pH value),不同的植物对培养基最适pH值的要求也是不同的(表21)，大多在5、65左右，一般培养基皆要求5.8，这基本能适应大多植物培养的需要。pH值适度因材料而异，也因培养基的组成而不同。以硝态氮作氮源和以铵态氮作氮源就不一样，后者较高一些。一般来说当pH值高于65时，培养基全变硬；低于5时，琼脂不能很好地凝固。因为高温灭菌会降低pH值(约0.20.3个pH值)因此在配制时常提高pH值0203单位。pH值大小调整可用01M的NaOH和0IM的HCI来调整。lml的NaOH可使pH值升高02单位，lml的HCl可使pH值降低02单位。调节时一定要充分搅拌均匀。,不同植物的最适pH值,氧气(oxygen),氧气是组织培养中必需的因素，瓶盖封闭时要考虑通气问题，可用附有滤气膜的封口材料。通气最好的是棉塞封闭瓶口，但棉塞易使培养基干燥，夏季易引起污染。固体培养基可加进活性炭来增加通气度，以利于发根。培养室要经常换气，改善室内的通气状况。液体振荡培养时，要考虑振荡的次数、振幅等，同时要考虑容器的类型、培养基等,第三节 培养基的制备,一、母液(stock solution)的配制和保存在植物组织培养工作中，配制培养基是日常必备的工作。为简便起见，通常先配制一系列母液，即贮备液。所谓母液是欲配制液的浓缩液，这样不但可以保证各物质成分的准确性及配制时的快速移取，而且还便于低温保藏。一般母液配成比所需浓度高10-100倍。母液配制时可分别配成大量元素、微量元素、铁盐、有机物和激素类等。配制时注意一些离子之间易发生沉淀，如Ca2+和S042+，Ca2+、,Mg2+和PO43-一起溶解后，会产生沉淀，一定要充分溶解再放入母液中。配制母液时要用蒸馏水或重蒸馏水。药品应选取等级较高的化学纯或分析纯。药品的称量及定容都要准确。各种药品先以少量水让其充分溶解，然后依次混合。一般配成大量元素、微量元素、铁盐、维生素等母液，其中维生素、氨基酸类可以分别配制，也可以混在一起。母液配好后放人冰箱内低温保存，用时再按比例稀释。,母液的配制方法：单配法：将培养基配方中的各种成分分别配成一定浓度的母液。一般用a:b表示，即每b毫升溶液中含有a毫克溶质。混配法：将几类营养成分按配方中的用量扩大一定倍数称量，分别溶解后每一类混合在一起定容到一定体积配成混合母液，浓度可用a mg/L表示，即配制一升培养基吸取该母液a ml.生长素配制时可先用少量95%酒精助溶。2，4D可用O1molL的NaOH或KOH助溶，加入温水定容。生长素常配成1mgml的溶液贮于冰箱中备用。,细胞分裂素类一般先用少量1N盐配溶解后，再加入温水冷却后定容，铁盐配法（MS为例）：在装有400ml 蒸馏水的烧杯中加入2粒苛性钠，溶解后加入3.73g EDTA-Na2，加热使其全部溶解，然后边搅拌边慢慢加入2.78g FeSO4.7H2O直至全部溶解，冷却后定容至500ml，置于冰箱中备用。,第四节 培养基的选择,在建立一个新的实验体系时，为了能研制出一种适合的培养基，最好先由一种已被广泛使用的基本培养基(如Ms培养基或B5培养基)开始。当通过一系列的实验，对这种培养基做了某些定性和定量的小变动之后，即有可能得到一种能满足实验需要的新培养基，选择最佳培养基。常用试验方法主要有单因子试验、多因子试验及广谱实验等。,一、单因子试验,在单因子试验中由于培养基中其他成分都维持在一般水平上，所以只变动一个因子，就可以找出这一因子对试验的影响和影响的程度。例如Ms基本培养基的其他成分和用量都不变，只变动NAA用量对某一培养物生根的影响，这种只研究一个因素的试验就是单因子试验。生物学试验不同于物理学或化学试验，最显著的差别是在生物学试验中必需设置对照组与试验组，试验组可以有一组或几组，随试验的复杂性而设置，对照组也可能有一组以上。,试验中要求对照组与试验组中的试验个体，即植物组织块或其他培养物，必须在遗传性、生理状态、前培养条件等方面，尽可能完全一致。以保证试验结果是来源于试验因子，而不是由于试验材料的不一致导致的。试验中各处理一般都要设有一定的重复，以取得可靠的试验结果。随试验规模和要求不同，大多每个项目要有410瓶，每瓶至少3块培养物或3丛小幼苗。,二、多因子试验,对培养基中两个或两个以上因素进行研究的试验称为多因子实验，试验可采用完全试验方案，也可选用正交设计方案，完全试验方案具有均衡完全的特点，各个因子的每个水平都相互搭配，构成了所有可能的处理组合，如研究NAA和6BA的最佳浓度组合，每个因子各设5个浓度水平(0，0.5，2.5，5，10mgL)，这两种因子各种浓度的所有组合，就构成了一个具有25项处理的试验见下表：,2种激素5种浓度的实验组合,完全试验方案试验因子越多，处理数越多，试验越复杂，消耗的精力、物力越多。为了减少试验处理，但又能准确全面地获得试验信息，通常采用正交试验。例如，采用正交设计，在使用此表时就可以安排4个因子，3种水平的试验，一共做9种不同搭配的试验，其结果相当于做了27次种种搭配的试验。正交试验虽然是多因素搭配在一起的试验，但,是在试验结果的分析中，每一种因素所起的作用却又能够明白无误地表现出来。因此，一次系统的试验结果，就可以把问题分析得清清楚楚，用有限的时间取得成倍的收获。在组织培养研究中，可用于同时探求培养基中适宜的几种成分的用量，如细胞分裂素、生长素、糖和其他成分的用量。,三、逐步添加和逐步排除的试验方法,在植物组织分化与再生的研究中，在没有取得可靠的分化与再生之前，往往添加各种有机营养成分，而在取得了稳定的再生之后，就可以逐步减少这些成分。在逐步添加时是使试验成功，在逐步减少时是缩小范围，以便找到最有影响力的因子，或是为了实用上的需要竭力使培养基简化，以降低成本和利于推广。在寻求最佳激素配比时，也经常用到这种加加减减的简单方法。,四、广谱实验法,在广谱实验法中，把培养基中所有组分分为4大类：无机盐有机营养物质(蔗糖、氨基酸和肌醇等)生长素细胞分裂素 对每一类物质选定低(L)、中(M)、和高(H)3个浓度,4类物质各3种浓度的自由组,合即构成了一项包括81个处理的实验。在这81个处理中最好的一个可用4个字母表示,例如，一个包含中等浓度无机盐，低等浓度生长素、中等浓度细胞分裂素和高等浓度有机营养物质的处理即可表示为MLMH。达到这个阶段，再试用不同类型的生长素和细胞分裂素即可找到培养基的最佳配方。这是因为不同类型的生K素和细胞分裂素对不同植物的活性有所不同。,第二章 外植体的选择及灭菌,第一节 外植体的选择泛指第一次接种所使用的植物组织、器官等一切材料。如，顶芽、茎段、叶片等。（一）.外植体的选择：一.部位：不同的植物、器官和组织其形态发生能力很不相同。在组培中，选择合适的，最易表达全能性的部位，是决定组培系成功建立的前提之一。,在选择植物外植体进行组织培养时，还要考虑待培养材料的来源是否保证，是否容易成苗；同时要考虑到该外植体，特别是经过脱分化产生的愈伤组织，是否会引起不良变异，丧失原品种的优良性状。茎尖：对大多数植物来讲，茎尖是较好的部位，由于其形态已经基本建成，生长速度快，遗传性稳定，也是获得无病毒苗的重要途径，但茎尖易受到材料来源的限制，而采用茎段（一般木本植物、较大的草本植物）可解决培养材料的不足。,叶片：由于叶片的来源最有保证，因而许多植物的组织培养以叶片为起始培养物，如，玫瑰、海棠、矮牵牛和豆瓣绿等许多植物。子叶或下胚轴：对一些培养较困难的植物，则往往可以通过其子叶或下胚轴来建立其组织培养体系。若有可能，最好对培养较困难的植物各部位的诱导及分化能力进行比较，从中筛选出最佳外植体。,二.取材季节：对大多数植物而言，应在生长开始的季节采样较好，若在生长末期或已进入休眠期时取样，则外植体可能对诱导反应迟钝或无反应。在母株生长旺盛的季节取材料，不仅成活率高而且增殖率也大。如，马铃薯在12月和4月所取的外植体具有强烈的再生能力。而23月间或511月间所取的材料，则很少能够再生。,三.生理年龄：按照生理学基本观点，沿植物体主轴，越向上的部位所形成的器官其生长时间越短的，其生理年龄也相应越老，越接近发育上的成熟，越易形成花器官。反之，越向基部，其生理年龄越小，幼年的组织都比老年的组织具有较高的形态发生能力。植株下部组织产生营养芽的比例高，而上部组织产生花器官的比例高。因此，外植体的采集尽量选用植物体最幼态的组织。,四.外植体的大小：外植体越大，