WS-T834-2024刚地弓形虫试验临床应用.docx
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1、ICS11.020CCSC50WS中华人民共和国卫生行业标准WS/T8342024刚地弓形虫试验临床应用ClinicalapplicationoftestsforToxoplasmagondii2024-04-02发布2024-09-01实施中华人民共和国国家卫生健康委员会发布前言本标准为推荐性标准。本标准在GB/T302242013刚地弓形虫试验临床应用基础上制定。与GB/T302242013相比,除结构调整和编辑性改动外,主要技术变化如下:更改了术语刚地弓形虫(见3.1,2013年版的3.1)和弓形虫病(见3.3,2013年版的3.2),增加了术语弓形虫感染(见3.2);将安全预防措施更改
2、为生物安全(见4,2013年版的6);将标本采集和处理更改为标本采集、转运和处理(见第5章,2013年版的第5章),增加了概述(见5.1)、直接镜检标本(见5.2)、组织培养标本(见5.3)、核酸检测标本(见5.4)和血清学检测标本(见5.5);一在检验方法中增加了概述(见6.1),将刚地弓形虫病原学检查更改为病原学检查(见6.2,2013年版的4.1),在直接镜检中增加了概述(见6.2.1.1)、体液标本(见6.2.1.2)、组织活检标本印片(见6.2.1.3)、组织活检标本切片(见6.2.1.4)、GiemSa法染色(见6.2.1.5)、光学显微镜镜检(见6.2.1.6)和结果判断(见6.
3、2.1.7),将接种和组织培养更改为组织培养(见6.2.2,2013年版的4.1.2);在核酸检测中增加了概述(见6.2.4.1)、实时荧光PCR(见6.2.4.2)和二代测序(见6.2.4.3);将刚地弓形虫抗体检测更改为抗体检测(见6.3,2013年版的4.2),在抗体检测中增加了抗体检测指标(见6.3.2)和抗体检测方法(见6.3.3),删除了刚地弓形虫IgG抗体检测(见2013年版的4.2.2)、刚地弓形虫IgM抗体检测(见2013年版的4.2.3)、刚地弓形虫IgA抗体检测(见2013年版的4.2.4)和刚地弓形虫IgE抗体检测(见4.2.5);一将试验选择更改为检验方法的选择,并移
4、入检验方法中(见6.4,见2013年版的A.2),在检验方法的选择中增加概述(见6.4.1)、初筛实验室(见6.4.2)和确证实验室(见6.4.3);-将质量保证更改为质量控制(见7,2013年版的A.4),并增加了概述(见7.1)、室内质控(见7.2)、实验室内结果可比性(见7.3)和实验室间结果比对(见7.4);将免疫诊断试验的临床应用更改为免疫学试验的临床应用(见第8章,2013年版的第7章),增加了概述(见8.1),将确定抗体状况更改为特殊人群发生感染的风险评估(见8.2,见2013年版的7D,将先天性感染的诊断更改为妊娠及孕前感染的诊断(见8.4,见2013年版的7.3),将新生儿感
5、染的诊断更改为先天性感染的诊断(见8.5,见2013年版的7.4);一在附录A中新增检验程序性能验证(见A.2),删除了试验选择(见2013年版的A.2)、假阳性反应(见2013年版的A.3)、质量保证(见2013年版的A.4)和参考实验室(见2013年版的A.5);增加了附录B。本标准由国家卫生健康标准委员会临床检验标准专业委员会负责技术审查和技术咨询,由国家卫生健康委医疗管理服务指导中心负责协调性和格式审查,由国家卫生健康委员会医政司负责业务管理、法规司负责统筹管理。本标准起草单位:北京大学人民医院、首都医科大学附属北京朝阳医院、首都医科大学附属北京友谊医院、武汉大学中南医院、四川大学华西
6、医院。本标准主要起草人:赵晓涛、王清涛、张正、苏建荣、李一荣、岳志红、马莹、马立艳、岳育红、夏长胜。刚地弓形虫试验临床应用1范围本标准规定了临床实验室刚地弓形虫试验及其临床应用,主要包括生物安全、标本的采集转运和处理、检验方法、质量控制和免疫学试验的临床应用。本标准适用于临床实验室开展刚地弓形虫的检测。2规范性引用文件下列文件中的内容通过文中的规范性引用而构成本标准必不可少的条款。其中,注日期的引用文件,仅该日期对应的版本适用于本标准;不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本标准。GB19781医学实验室安全要求GB/T38576人类血液样本采集与处理GB/T38735人类尿
7、液样本采集与处理WS/T486弓形虫病的诊断WS/T573感染性疾病免疫测定程序及结果报告WS/T661静脉血液标本采集指南CNAS-C1.02-A(X)I医学实验室质量和能力认可准则的应用要求CNAS-G1.O37临床化学定量检验程序性能验证指南CNAS-G1.038临床免疫学定性检验程序性能验证指南3术语和定义下列术语和定义适用于本标准。3.1刚地弓形由Toxoplasmagondii刚地弓形虫是法国NiCOne和ManCeaUX于1908年首先从北非刚地梳趾鼠(CtenOdaetyIUSgondii)单核细胞内发现的一种原虫,其虫体似弓形或半月形,故被命名为刚地弓形虫,简称弓形虫。弓形虫
8、整个生活史过程包括5个发育期,即速殖子,在假包囊内或外;缓殖子,在组织包囊内;子孩子,在卵囊内;裂殖体,内含裂殖子;配子体,有雌(大)配子体和雄(小)配子体。3.2弓形虫感染Toxoplasmagondiiinfection弓形虫能寄生于人体所有有核细胞,猫科动物是其唯一的终末宿主,其它哺乳动物、鸟类和人类都可为其中间宿主。感染后弓形虫经人体消化道黏膜、损伤的皮肤和胎盘等途径随血液或淋巴液扩散到全身有核细胞内,形成包囊后可长期寄生于中枢神经系统或横纹肌内,免疫功能正常情况下可不出现明显临床症状和体征。感染途径包括先天性和获得性两种。先天性感染是指虫体经母体胎盘垂直传染给胎儿。获得性感染方式主要
9、包括食入被弓形虫卵囊污染的食物或水、摄入含有包囊的未熟肉类或乳制品、输血或器官移植,以及实验室工作人员接触污染器材后,不慎经口、鼻和眼或注射器针头刺伤皮肤等途径,亦可造成感染。3.3弓形虫病toxoplasmosis弓形虫寄生于人体并侵犯脑或眼、肝、心、肺等器官,破坏有核细胞引起相应的临床症状和体征。免疫功能低下者或缺陷者易发病,为机会性人兽共患寄生虫病。4生物安全在标本的采集、储存、转运、处理、检测,以及检测后剩余标本的处理等操作过程中,特别是在风险较高的直接镜检和组织培养等操作过程中,存在感染相关人员的风险,应严格按照医学实验室安全要求规范操作。5标本采集、转运和处理5.1 概述标本须按规
10、范要求采集,对疑似病例应多次采集送检;标本应做好标记,可使用粘贴好条形码的标本采集容器盛放标本,标本条形码至少包含唯一随机产生的条形码号、患者标识(包括患者姓名和住院患者住院号或是门诊患者就诊卡号)、检测项目、采集时间和执行科室等信息:标本不能及时送检时,通常可在-20以下冷冻保存180天。冻存标本如需多次使用,能分装的应分装,避免多次冻融。不同类型和不同检验项目的标本,均应避免细菌污染,按照要求常温或冷链转运。5.2 直接镜检标本用于直接观察弓形虫的标本包括体液标本(脑脊液、支气管肺泡灌洗液、痰、唾液、胎盘渗出液等)和组织活检标本(脑组织、淋巴结、肺组织、骨髓、肝脏组织、脾脏组织等)。骨髓标
11、本应使用EDTA抗凝。将无菌采集的标本放入采样管或采样瓶内,组织活检标本应浸没在无菌生理盐水中保湿,标记待检标本,常温3天内送检。若是多种标本需要同一天平行检测,在预固定后可在-20以下冷冻保存。对于中枢神经系统有局灶性体征或病灶产生占位效应的患者,慎重行腰椎穿刺,特别是病变位于颅后窝时:如果未见局灶性体征和明显占位效应,可进行脑脊液检查。如果采自尸体,还可取脑、肝、脾、肺、心、肾、眼球、肌肉和肠道等相应病变部位的组织。5.3 组织培养标本用于组织培养的标本包括脑组织、淋巴结、骨髓等。将无菌采集的标本放入采样管或采样瓶内,组织标本应浸没在无菌生理盐水中保湿,标记待检标本,常温立即送检。5.4
12、核酸检测标本核酸检测标本的采集应严格遵守无菌原则,标本应直接从患者感染部位的体液或组织中进行采集。当患者存在感染表现但病情危重或不能耐受有创操作时,宜考虑采集患者的血液标本。对于有菌部位的标本,在标本采集过程中应尽量避免引入该部位的正常菌群。所有采集的标本均应及时送检,如不能及时检测,应于-20C以下冷冻保存。标本远距离运输应采用冷链运输。核酸检测标本类型包括血液标本、体液标本(如尿液、脑脊液、房水、支气管肺泡濯洗液、胸腔积液、胎盘渗出液等)和组织标本(如脑组织、淋巴结、肺组织、骨髓、肝脏组织、脾脏组织等)。血液和骨髓标本应使用EDTA抗凝。5.5 血清学检测标本应采用体外诊断试剂盒说明书标明
13、的标本类型进行检测。抗体和抗原检测使用的标本类型包括血清、血浆、脑脊液和房水。脑脊液和房水应与同一时间采集的血清或血浆标本平行检测。但目前国内尚无适用于脑脊液和房水标本检测的试剂盒。标本可在常温下过夜运送,如果运送需数天,则应冷链运送。标本在4C可储存7天,也可于-20C以下冷冻保存。6检验方法6.1 概述弓形虫感染和弓形虫病的实验室检验方法主要包括病原学检查和抗体检测,根据实验室开展的检验项目,可将实验室分为弓形虫病初筛实验室和确证实验室。6.2 病原学检查6.2.1直接镜检6.2,1.1概述直接镜检简便,特异性高,灵敏度低,要求检测人员具备丰富的形态学识别经验。此外,该法阴性不能排除,必须
14、做进一步检查。6.2.1.2体液标本500g离心IOmin,取沉淀滴在洁净玻片上制成涂片,GiemSa法染色后镜检。6.2.1.3组织活检标本印片将组织标本置于两张洁净玻片之间,轻压,再将玻片打开,印片即可制成。室温干燥,无水乙醇固定,GiemSa法染色后镜检。6.2.1.4组织活检标本切片用10%甲醛溶液固定,水冲洗,依次经70%、80%、90%乙醇溶液脱水,各30min,再浸入95%、100%乙醉溶液各2次,每次20min,浸蜡、石蜡包埋后连续切片,厚度7um10m,贴片、二甲苯脱蜡后备用。6.2.1.5Giemsa法染色将染液覆盖涂片、印片或是切片表面,染色Imin3min,滴加等量的磷
15、酸盐缓冲液至玻片上,轻吹混匀,4min-8min后用缓冲液冲洗,晾干。6.2.1.6光学显微镜镜检在IoXlOO倍油镜下,位于组织细胞内的弓形虫速殖子呈新月形,一端较尖、一端钝圆,大小约3m7m2m4m,经GiemSa法染色后胞浆呈蓝色,胞核呈紫红色位于虫体中央偏后,速殖子既可独立存在,也可在组织细胞内不断增殖,达数个至十几个,虫体被组织细胞膜包绕形成假包囊。弓形虫缓殖子大小约5Hln100m,数个至数千个虫体位于圆形的包囊内,囊壁坚韧。6.2.1.7结果判断镜检发现假包囊或包囊判为病原学阳性。6.2.2组织培养组织培养操作复杂、成功率低、质量控制困难,实验室不常规开展。组织培养通常将患者体液
16、如脑脊液、支气管肺泡灌洗液或羊水离心沉淀,用培养基将沉淀物重悬后与组织细胞(猴肾或猪肾细胞等)共孵育以分离、鉴定虫体。6.2.3抗原检测一酶联免疫吸附试验(enzymelinkedimmunosorbentassay,E1.ISA)血清或体液中的循环抗原比特异性抗体出现早,是筛查病原体存在的重要依据,可使用E1.lSA双抗体夹心法检测,但可能存在假阳性和假阴性结果。有关弓形虫检测试剂盒和检验程序性能验证的要求见附录A。目前国内尚无通过国家药品监督管理局注册的弓形虫抗原检测试剂盒。如果实验室自行研制检测试剂或建立检验程序,则该类检测属于实验室自建项目,应在执业医师指导下在本单位内使用,同时应严格
17、遵守国家的相关管理规定。6.2.4核酸检测6.2.4.1概述为确定是否感染,可应用分子生物学技术如聚合酶链反应(PolymeraSechainreaction,PCR)技术等检测生物标本中弓形虫特异性核酸。多个目标基因可用于弓形虫的核酸检测,包括Bl基因、AF146527序列、ISSrDNA、ITS-1、SAGKSAG2、BAGl.GRAl利JMlC3等。目标基因序列的选择对于提高PCR检测的灵敏度起着至关重要的作用。目前国内尚无通过国家药品监督管理局注册的弓形虫PCR试剂盒。另外,利用二代测序技术进行宏基因组分析也可用于弓形虫感染的诊断。弓形虫核酸检测阳性是活动性感染的有力证据,但核酸阴性并
18、不能排除弓形虫感染。6.2.4.2实时荧光PCR实时荧光PCR是目前应用最广泛的弓形虫核酸检测技术,常以Bl基因、AF146527字列、SAGl和BAGl为靶基因,引物和探针相结合使用不仅可提高检测的特异性和灵敏度,而且无需进行PCR扩增后的产物分析,避免发生产物污染,该法检测时间短,但需要实时荧光定量PCR仪。附录B分别以Bl基因和AF146527序列为靶基因,并提供靶基因序列、扩增体系和扩增条件来介绍实时荧光PCR检测弓形虫核酸。6.2.4.3二代测序宏基因组二代测序具有无偏倚性和广覆盖等优点,是一种有效的诊断弓形虫病的方法。其主要步骤包括核酸提取、人源性核酸去除、文库构建与测序及原始测序
19、数据质量分析与评价,随后去除质量不符合要求的序列和标签序列,并在序列拼接完成后先与人基因组序列进行比对,从而将人源性基因序列去除,最后在病原体的序列数据库中将保留的序列与已知病原体的序列进行比对,判定病原体的种属,并分析病原体的数量和丰度。6.3抗体检测血清学检测弓形虫抗体是目前临床实验室诊断弓形虫感染的主要方法。IgMIgG.IgA、IgE和IgG亲和力检测均有助于弓形虫感染和弓形虫病的诊断,检测方法主要包括E1.lSA、化学发光免疫分析及免疫层析试验等。6.3.2抗体检测指标IgM:感染后第1周即可在血清中检测到,被认为是急性弓形虫病早期敏感的诊断指标,血清IgM也可能持续数月或数年阳性。
20、IgG:感染后1周2周可在血清中检测到,通常在1个月2个月内达到高峰,然后逐渐下降,不同个体下降速度不同,往往可终身持续阳性。定性的IgG抗体被认为是感染过的指标,无法区分既往和近期感染。定量IgG抗体4倍以上滴度或浓度增高可提示近期活动性感染。IgA:感染后的第1周产生,并在1个月内达到高峰,很快消失。弓形虫IgA对疑似先天性感染新生儿的诊断有辅助作用。但目前国内尚无通过国家药品监督管理局注册的弓形虫IgA检测试剂盒。IgE:也在感染早期产生,很快消失。弓形虫IgE抗体检测也有助于判断是否为急性感染。但目前国内也尚无通过国家药品监督管理局注册的弓形虫IgE检测试剂盒。IgG亲和力:在急性感染
21、期IgG与抗原结合力较弱,在慢性感染期抗体与抗原结合力增强,因此IgG亲和力检测是区分既往和近期感染的另一指标。高IgG亲和力提示感染至少发生在3个月5个月之前,为判断慢性感染最有用的指标,可排除急性感染。但IgG低亲和力并不一定提示近期感染,因低亲和力抗体在感染后1年还可检测到。通常不能根据弓形虫某一类抗体的检测结果作出诊断,应进行弓形虫多类抗体联合检测。如果患者相隔2周3周采集的两份血标本发生IgG血清学从阴性到阳性的转换,或是IgG滴度或浓度4倍以上升高;或是单次检测IgM阳性,IgG阴性或阳性。上述几种情况一般可以作为弓形虫近期感染的依据之一。6.3.3抗体检测方法6.3.3.1E1.
22、ISAEIJSA是弓形虫IgG和IgM抗体测定应用最广泛的试验,具有高灵敏度和特异性,其中IgG检测最常使用间接法,IgM检测可使用间接法或捕获法。间接法是将可溶性抗原包被于固相载体:患者血清与抗原共同孵育、洗涤后加入酶标记抗人IgG或IgM抗体孵育;洗涤后加入底物孵育,再加入终止液,酶标仪读取吸光度值。不同厂商的产品操作步骤不尽相同,应按照产品说明书要求进行实验。弓形虫IgG抗体有世界卫生组织(WHo)标准品,定标品可溯源至WHo标准品的不同厂家试剂的检测结果有一定的可比性(注:WHO标准品已经有四代产品,量值结果只有溯源至同一代次的标准品才具有可比性)。弓形虫IgM抗体检测,不同厂商试剂的
23、结果只能进行阴性或阳性的定性比较。假阳性反应常由类风湿因子引起,弓形虫IgG抗体的封闭可导致IgM检测的假阴性,捕获法可减少这种干扰。E1.JSA也可用于IgG亲和力检测。方法为同时检测双份血清标本,其中一份经尿素处理分离低亲和力抗体。计算尿素处理标本与未处理标本的终点滴度比值,以百分数表示。6.3.3.2化学发光免疫分析(ChemilUmineSCenCeImmunoassayjC1.iA)C1.IA是目前弓形虫IgG和IgM抗体测定的主流方法,其精密度、灵敏度和特异性均高于E1.ISA,可以做IgG、IgM定量检测,但需要使用化学发光免疫分析仪,其中IgG检测最常使用间接法或是双抗原夹心法
24、,IgM检测常使用捕获法。不同厂商的产品检测原理和操作步骤不尽相同,应按照产品说明书要求进行操作。C1.IA亦可用于IgG亲和力检测。C1.IA法弓形虫IgG和IgM抗体测定结果的可比性同E1.lSA试验。其干扰因素也同E1.ISA试验类似。6.3.3.3免疫层析试验(Iinmunochromatographictest,ICT)ICT可定性检测弓形虫IgG和IgM抗体。将特异性抗原固定于硝酸纤维素膜的某一区带,在硝酸纤维素膜的一端加入标本后,由于毛细管虹吸效应,标本沿着膜向前移动,当移动到固定有抗原的区域时,标本中的抗体与抗原发生特异性结合。用免疫胶体金染色可使该区域显示颜色,肉眼可判定结果
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