霍乱弧菌实验室检验技术.ppt
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1、2023/11/14,霍乱实验室检测技术,2023/11/14,内容,一、霍乱概述二、霍乱病原学三、霍乱弧菌常规检验四、霍乱弧菌的快速诊断五、霍乱弧菌的噬菌体-生物分型六、霍乱菌株的管理、保存与上送,2023/11/14,一、霍乱概述,霍乱是由01群和0139群霍乱弧菌(Vcholerae)引起的急性肠道传染病,发病急、传播速度快、波及范围广、危害严重的甲类传染病。是国内交通检疫传染病之一。也是当今三种国际检疫传染病中最严重的一种。,2023/11/14,霍乱病原菌发现,1883年德国科学家Koch发现霍乱弧菌1905年埃及埃儿托检疫站首次分离到ElTor弧菌,与霍乱弧菌甚为相似,但经过多年的
2、观察并不致病或仅引起轻度腹泻,直到1937-1958年发生4次爆发后才逐渐认识到ElTor弧菌致病性1992年10月印度马德拉斯发现了新菌型O139霍乱弧菌,2023/11/14,二、霍乱病原学,霍乱的病原学分类霍乱的病原学特征,2023/11/14,霍乱弧菌抗原结构及分类,抗原结构 霍乱弧菌有耐热的菌体(O)抗原和不耐热的鞭毛(H)抗原。H抗原为霍乱弧菌属所共有;O抗原有群特异性和型特异性两种抗原,是霍乱弧菌分群和分型的基础。WHO腹泻控制中心将霍乱弧菌分为三群。01群霍乱弧菌:包括古典生物型霍乱弧菌(vibrio cholerde)和埃尔托生物型(vibrio cholerde EL-To
3、r biotype)。01群的特异抗原有A、B、C三种,其中A抗原为01群所共有,A抗原与其他B与C抗原结合则可分为三型,即:原型AC(稻叶,Inaba)、异型AB(小川,Ogawa)和中间型ABC(彦岛,Hikojima)。,2023/11/14,非01群霍乱弧菌:本群弧菌鞭毛抗原与01群相同,而菌体(0)抗原则不同,不被01群霍乱弧菌多价血清所凝集,依O抗原之异,本群可分为137个血清型。以往认为本群仅引起散发的胃肠炎性腹泻,一般此类弧菌感染不作霍乱处理,但1992年在印度及孟加拉等地发生霍乱暴发流行,后证实流行菌不被01群和137个非01群霍乱弧菌诊断血清所凝集。乃定为0139霍乱弧菌,
4、并认定为真正的霍乱弧菌。不典型01群霍乱弧菌:可被多价01群血清所凝集,但该群菌不产生肠毒素,因此无此病性,2023/11/14,霍乱病原体分类,古典生物型 小川型 O1群 稻叶型 埃尔托生物型 颜岛型霍乱弧菌 霍乱病原菌 O139群(Bengal)非O1群 O2-O200群 腹泻病原菌,2023/11/14,O1群和O139群抗原构造与血清分型,2023/11/14,霍乱病原学特点,形态与染色弧状或逗点状革兰染色阴性有一根单鞭毛,细菌运动非常活泼,呈鱼群穿梭样或流星状,2023/11/14,革兰染色,2023/11/14,电镜负染色鞭毛,2023/11/14,O139群和O1群霍乱弧菌特性对
5、比,近年来,O139群霍乱弧菌已成为霍乱流行的主要病原。通过研究证明,O139群霍乱弧菌可能是O1群EItor 生物型的变异株。(1)抗原构造(2)分泌肠毒素(3)耐药性(4)临床特点,2023/11/14,抗原构造,O139群霍乱弧菌不被已知的O1-O138群霍乱弧菌诊断血清所汇集。表明本菌的抗原性与O1群和其它非O1群霍乱弧菌有明显区别。革兰氏阴性菌的抗原性都是由细胞壁的脂多糖(LPS)所决定。通过对O139群霍乱弧菌的LPS进行化学分析和血清学分析后发现O139群霍乱弧菌缺少O1群霍乱弧菌LPS中的特异性成分。通过两者进行提取其LPS然后进行被动溶血试验与被动溶血抑制试验检测,结果显示两
6、者抗原性有显著不同。O139群霍乱弧菌有荚膜而O1群霍乱弧菌无荚膜。,2023/11/14,两者不同点:,O139群所致病中有44.3%可发生腹部痉挛,也有引起严重粘液性腹泻的,进入外周血液可引起发热,出现菌血症或败血症。印度出现20例病人中有17例发热、白细胞增多。而O1群引起的病人未曾见过。鉴别两者,必须通过血清学诊断来区分。O22群与O139群血清有交叉汇集反应,必须用O22群弧菌吸收,去除交叉汇集现象。,2023/11/14,总之,O139群霍乱弧菌和O1群弧菌二者生物型既有区别又有联系。最大区别是荚膜和O1群生物合成基因的有无这些提示,O139群霍乱弧菌不是O1群EItor生物型简单
7、的点突变。可能存在更复杂的突变机制。二者是否只有个别基因和表型的差异以及是什麽原因导致了这些差异(尤其是O139群表面荚膜的出现)还有待于进一步的研究。,2023/11/14,三、霍乱弧菌常规检验,样本采集、送检和保存 霍乱的病原学检查病原分离技术要点,2023/11/14,样本采集、送检和保存,粪便:标本的采集以病人粪便为主,水样便采取13mL,成形便采取指甲大小的粪量,亦可用直肠棉拭或采便管由肛门插入直肠内35cm处采取。急性期病人取水样便标本在增菌培养的同时可取其粘液絮片或用棉拭子直接接种于碱性琼脂、TCBS琼脂培养基。带菌者粪便都应接种碱性蛋白胨水培养基,放37增菌68h后,从菌膜下表
8、层取一接种环培养物,划线接种于碱性琼脂、TCBS琼脂培养基。不能立即检查的,要放入碱性蛋白胨水或文腊二氏保存液或插入Cary-Blair二氏半固体保存培养基中。标本与保存液比例约为15。,2023/11/14,水样:十倍浓缩碱胨水增菌培养法:水体的采集一般用无菌的500ml水样瓶采集相对静止的表层水(深度为30cm以内)500ml。非疫情状态下的监测时间一般在清晨,此时水体未受人群活动等因素影响。每个采样点中采样位置应相距数米、采集2瓶做为平行检测,3小时内送检。取450ml水样,用1M 氢氧化钠调整至pH 8.4-9.2,ml。然后加10倍浓缩碱性胨水50ml。再加入1%亚碲酸钾0.250.
9、5 ml和1000单位/ml青霉素1 ml。37培养过夜,取菌膜下表层培养物接种4号培养基分离培养同时吸0.20.5 ml转种于10ml碱性胨水管中作二次增菌,37培养68h再划线接种于碱性琼脂、TCBS琼脂培养基进行分离。,2023/11/14,食品及水产品样本:涂抹采集:使用无菌棉签涂抹5只以上水水生动物表面、腮部及泄殖腔,直接接种到20ml碱性蛋白胨水作为增菌液处理。37培养过夜,取菌膜下表层培养物接种4号培养基分离培养同时吸0.20.5 ml转种于10ml碱性胨水管中作二次增菌,37培养68h再划线接种于碱性琼脂、TCBS琼脂培养基进行分离。整体或局部采集:在实验室应以无菌操作将其解剖
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