体内药物分析 生物样品与样品制备.ppt.ppt
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1、1,第一节 生物样品的种类、采集、制备 与贮存一、生物样品的种类、采集和制备,第三章 生物样品与样品制备,2,体内药物分析采用的生物样品包括各种体液和组织,常用的是血液(血浆、血清、全血)、尿液、唾液、头发、脏器组织、乳汁、精液、脑脊液、泪液、胆汁、胃液、胰液、淋巴液、粪便等样品。其中最常用的是血浆或血清,因为它们可以较好地体现药物浓度和治疗之间的关系。,3,(一)血液1.血样的采集 供测定的血样应能代表整个血药浓度,因而应待药物在血液中分布均匀后取样。动物实验时,可直接从动脉或心脏取血。对于病人,通常采取静脉血。当血药浓度高和分析方法灵敏时,也可从毛细管(手指、耳垂、脚趾)采少量血。,4,测
2、定血中药物浓度,通常是指测定血浆或血清中的药物浓度,而不是指含有血细胞的全血中的药物浓度。一般认为,当药物在体内达到稳定状态时,血浆中药物浓度与药物在作用点的浓度紧密相关,即血浆中的药物浓度反映了药物在体内(靶器官)的状况,因而血浆浓度可作为作用部位药物浓度的可靠指标。,5,药物动力学参数测定中常用的取样次数见示意图:,6,(1)血浆(plasma)的制备:血液置含有抗凝剂(如:肝素、草酸盐等)的试管中,混合后,离心,分离血细胞,淡黄色上清液即为血浆。肝素是一种含硫酸的粘多糖,常用其钠盐、钾盐,它能阻止凝血酶原转化为凝血酶,从而抑制纤维蛋白原形成纤维蛋白。一般1ml的全血需加0.10.2mg的
3、肝素。加入血样后立即轻轻旋摇,但勿太猛烈,以免导致血细胞破裂。,7,(2)血清的制备 采集的静脉血液置试管中,放置30 min到1 h,由于激活了一系列凝血因子,血中的纤维蛋白原形成纤维蛋白,血液逐渐凝固,离心后上层澄清的淡黄色液体即为血清。,8,血浆比血清分离快,而且制取的量约为全血的50%60%(血清只有30%40%),多数研究者喜用血浆进行分析测定。若血浆中含有的抗凝剂对药物的测定有影响,则应使用血清样品。血浆只比血清多含一种纤维蛋白原,而血纤维蛋白几乎不与药物结合,因此两者的药物浓度是一样的,且测定血药浓度的方法也是通用的。注意:血浆或血清有溶血时可能会影响测定 药物不稳定时,用血浆更
4、好,9,(3)全血的制备 采集的血液置于含有抗凝剂的试管中,轻轻混匀,不离心,防止凝血,保持血浆和血细胞混合在一起。需要测全血中血药浓度的情况:测定平均分布于血细胞内、外的血药浓度血浆药物浓度波动大,且难以控制血浆药物浓度太低,10,(二)尿液 尿药测定的目的与血液、唾液样品不同,主要用于药物剂量回收研究、药物尿清除率、生物利用度的研究,并可推断患者是否违反医嘱用药,预测药物的代谢过程及测定代谢类型 体内药物清除主要是通过尿液排出,药物可以原型(母体药物)或代谢物及其缀合物(conjugates)等形式排出。,11,尿液中药物浓度较高,收集量可以很大;因属于非损伤性采样方式,收集方便。但由于易
5、受食物种类、饮水多少、排汗情况等影响,并且在尿液排出过程中,不仅包括肾小球的滤过,还包括肾小管的重新吸收,因此,尿药浓度变化较大,与血药浓度的相关性很不理想。,12,尿药浓度变化大,应测定一定时间内排入尿中药物的总量。,健康人排出的尿液是淡黄色或黄褐色,成人一日的排尿量为1-5L,尿液的密度为1.1051.020,PH值在4.88.0之间。放置后会析出盐类,并有细菌繁殖、固体成分的崩解,因而使尿液变浑浊。由于这些原因,必须加入适当的防腐剂保存。,动物试验中用代谢笼收集尿、粪,只能以时间段采集,有时会有收集不到的情况。,13,尿样 优点:容易获得,属非损伤性取样,且样品量大;尿中药物浓度高,含有
6、缀合物或代谢物,是研究代谢物结构的首选样品;蛋白含量极低,不需去蛋白处理。缺点:与血药浓度不相关,难以反映药物作用过程;受肾功能、pH影响;难以定时定量取样,易污染;所含成分复杂,已知其中有紫外吸收的化合物就达数十种。尿样测定多用于药物排泄、生物转化研究。,14,(三)唾液,唾液是无损伤性采样,易收集。一些药物的唾液药浓(S)与血浆游离药浓(P)密切相关,因此,在TDM中可利用测定S代替P监测;唾液样品也可用于药代动力学研究。,15,腮腺分泌水、淀粉酶舌下腺、颌下腺分泌粘液和浆液质的混合液唾液分泌量1200ml蛋白含量为血浆的十分之一PH6.2-7.4,变化大,16,唾液的采集应尽可能在刺激少
7、的安静状态下进行。一般在漱口后15min收集,至少采集10 min。采集混合唾液也可用物理或化学的方法刺激,在短时间内得到大量的唾液。非刺激法条件下唾液直接流入容器内,流速慢,仅约0.05 mL/min。物理刺激法唾液分泌流速为13mL/min;化学刺激法是用酸刺激味觉或者毛果芸香碱刺激唾液分泌,流速可达510mL/min。,唾液的采集,17,Crouch研究发现:采集方法对唾液中药物浓度有显著影响,实验证明唾液中可待因的平均浓度在非刺激条件下比酸刺激条件下高3.6 倍,比机械性刺激低50%,是商品化采集装置的77%。,shellee 的实验证明:酸刺激组和非刺激组相比,非刺激组唾液与血液药物
8、浓度相关度(0.901)明显高于酸刺激组(0.872),说明酸刺激采集对唾液与血液药物浓度相关性有不利影响。,18,优点:不受时间和地点的限制,可反复采集,采集时无痛苦、无感染危险;唾液成分比血液、尿液简单,提取方便,有时可直接上样测定;有些唾液中药物浓度可以反映血浆中游离型药物浓度。,19,缺点:唾液是各腺体分泌的的混合液体,其组成发生经时变动;因此,唾液中的药物浓度与血浆中的游离型药物浓度相比就容易变动;唾液中药物浓度与血浆中药物浓度的比值(S/P)只有少数药物是恒定值。有些与蛋白结合率较高的药物,药物在唾液中的浓度比血浆浓度低得多,需要高灵敏度的分析方法才能检测到 对有些患者(昏迷)不能
9、采集唾液样品。,20,唾液在体内药物分析中的应用:唾液样品比血液样品易采集,样品成分简单,前处理方便。有的药物在血液与唾液中的浓度密切相关,可以考虑用唾液代替血液作为药物监测的样本。唾液与血液中药物含量的相关性研究,可以为药物的检测和法医学鉴定提供理论基础 林中等对四种抗癫痫药物在唾液与血清中浓度的相关性进行了研究,结果显示,四种药物在唾液与血清中的浓度之间有较好的线性关系,其 r 分别为:卡马西平0.973 0;苯妥英钠0.955 6;苯巴比妥0.962 0;丙戊酸钠0.928 6,可根据唾液药物浓度来计算相应的血药浓度值。,21,(四)组织,在药物动物试验及临床上由于过量服用药物而引起的中
10、毒死亡时,药物在脏器中的分布情况可为药物的吸收、分布、代谢、排泄等体内过程提供重要信息。首先,将检材均匀化,制成水基质溶液,再用适当方法提取:,5.有机溶剂萃取法,4.酶水解法,3.酸水解或碱水解,2.沉淀蛋白法,1.匀浆化法,22,(五)头发,头发样品具有广谱性、积累性、稳定性、依时性、相关性、指纹性 毛发样品取样方便,无伤害,检样掺伪可能性低,能得到以往较长时间的用药情况信息,可用于体内微量元素的含量测定,但预处理复杂,分析对象含量低,需要精密仪器测定。,毛发通过毛根的毛细血管供应营养,药物、微量元素就是从这些毛细血管进入毛发中。,23,滥用药物、抗抑郁药和抗精神病药等药物都有长期用药的方
11、式,由于药物在头发中的积累和储存,为这些药物的检测提供了可能性。,尼古丁、卡马西平、阿米替林、多虑平、安坦、氯丙嗪、泰尔登、三氟拉嗪、氯氮平和氟哌啶醇等精神药物均能进入头发,但进入头发的难易程度是不一致的。药物进入头发的难易程度可能与药物的分子量、极性和脂溶性有关。,指甲与头发类似,24,二、生物样品的贮存与处理,(一)冷藏或冷冻 采样后除立即分析外,为防止药物发生变化,应:短期保存,可 4 冷藏长期保存,可20 冷冻,不要反复冻融。,小技巧:按测定时需要的体积分装一支!,25,(二)有时,还应考虑加入稳定剂:酶抑制剂:一些酯类药物,如普鲁卡因、阿糖胞苷,易受血浆酯酶作用而发生水解,则应在采样
12、后立即加入酶抑制剂如氟化钠等。抗氧化剂:一些易氧化的药物,可加入维生素C或其它抗氧化剂。如血浆中儿茶酚类药物常规保存仅4周,若加入适量VC,则能保存10周。奥氮平很容易被空气氧化,因此在样品的储存和提取时加入了25%的维生素C 溶液10ul 作为抗氧剂,26,第二节 生物样品的预处理与制备,进行体内药物分析时,除了极少数情况下只需将样品进行简单处理就可以直接测定外,都要采取分离、净化、浓缩、化学衍生化等预处理技术,为测定创造良好的条件。样品预处理是体内药物分析中极为重要的环节,也是分析中最困难、最繁复的工作。由于药物在体内存在形式不同、待测药物浓度低、生物介质组份繁杂、待测药物类型众多、理化性
13、质各异等原因,对生物样品的预处理很难规定固定的程序和模式,而必须结合实际情况,采取适当的分离、净化、浓集、化学衍生化等技术。,27,60%以上工作和费用用在样品前处理上,28,(一)将药物从缀合物(尿)或结合物中释放出来,以测定药物的总浓度(二)将微量药物从复杂的介质中纯化、富集出(三)为适应和符合分析方法所要求的专属性、灵敏度等。(四)防止分析仪器的污染,提高测定灵敏度、准确度、精密度和选择性等,一、生物样品预处理的目的,29,二、样品制备时应考虑的问题,预处理时要考虑以下问题:,1.被测组分的理化性质、存在形式、浓度范围,2.测定目的,3.生物样品种类和基质干扰类型,4.样品的化学组成,5
14、.药物的蛋白结合率,6.被测组分在预处理过程中的稳定性,7.样品在收集、储存和预处理过程中的容器污染,8.预处理过程尽量简单、尽可能高的精密度和准确度,9.预处理的最后一步应使被测组分富集,10.选用的分析方法是否具有专属性、是否满足灵敏度要求,30,(一)药物的理化性质和存在形式(二)待测药物的浓度范围(三)药物测定的目的(四)选用的生物样品类型(五)样品预处理与分析技术的关系,二、样品制备时应考虑的问题,其中5个重点问题:,31,(一)经有机破坏的方法,1.湿法破坏 硝酸-高氯酸法;电热消化器法;电热板消化法;烘箱消化法。2.干法破坏 高温电阻炉灰化法;低温等离子灰化法3.氧瓶燃烧法,三、
15、生物样品的预处理技术,以上方法将有机物破坏,只能进行元素分析,32,(二)去除蛋白质,目的:去除蛋白质可使结合型的药物释放出来,以便测定药物的总浓度;去除蛋白质也可预防提取过程中蛋白质发泡,减少乳化的形成,以及可以保护仪器性能,延长使用期限,33,去除蛋白质有以下几种方法,1.溶剂解法-加入与水相混溶的有机溶剂操作简单,快速,精密度好常用,特别在LC-MS法中乙腈血浆=1.51,99.4%蛋白沉淀,颗粒大,易离心除去 甲醇血浆=3.01,98.9%蛋白沉淀,颗粒小,不易离心除去,2.加入中性盐 常用饱和硫酸铵、硫酸钠,34,3.加入强酸 10%三氯醋酸、6%高氯酸 4.加入含锌盐及铜盐的沉淀剂
16、 5.超滤法 蛋白质大分子不能通过半透膜 游离药物 6.酶水解法 枯草杆菌酶,贵,时间长 少用 7.加热法 少用,疑问:2、4法中的盐使溶液的极性更强,药物会游离出?在色谱法中,高浓度的盐会析出,把柱子堵了,35,以上去除蛋白质法仅去除了蛋白质(只起到保护色谱柱的作用),但内源性的杂质都在,样品浓度还被稀释。基本上不能用光谱法测定。若用色谱法分离,干扰严重,就得花更多的精力才能分离好。,对色谱法来说,它不是好方法,36,(三)分离、纯化与浓集,有差别才有可能分离!,生物样品含有大量可影响测定的内源性杂质,加上服用的药物、代谢物、同时服用的其他药物,组成一个极其复杂的混合物。,如何将微量的药物从
17、如此复杂的混合物中分离出来?,37,1.液-液萃取法(LLE),原理:多数药物是亲脂性的,在适当的有机溶剂中的溶解度大于在水相中的溶解度,而生物样品中的大多数内源性杂质是强极性的水溶性物质(差别)。因而用有机溶剂萃取一次即可除去大部分杂质,从大量的样品中提取药物经浓集后测定。,38,采用LLE要考虑的几个问题,(1)溶剂的选择与纯度要求 纯度AR以上 了解药物与溶剂的化学结构与性质,按相似相溶原则选用对药物的未电离分子可溶,而对电离形式的分子不溶(光谱分析法)沸点低、易挥发、浓集与水不相混溶无毒,不易燃烧不易形成乳化(氯仿易乳化,毒性大)具有较高的化学稳定性和惰性不影响紫外测定 表3-6 毒性
18、大的尽量不用,39,(3)水相的PH值 主要由药物的pKa决定!当pH与pKa相当时,50%药物以非电离形式存在。对于碱性药物,最佳pH值要高于pKa 1-2单位;对于酸性药物来说,则要低于pKa值1-2单位。这样就可使90%的药物以非电离的形式存在从而更易溶于有机溶剂中!(丙戊酸的pKa4.95)但生物样品一般多在碱性下提取。因为多数药物是亲脂性的碱性物质,而生物样品中内源性物质多是酸性的,在碱性下用有机溶剂提取时内源性杂质不会被提取出来,(2)有机溶剂相和水相的体积比 11或21 由实际情况决定,文献中有的101以上,40,由于血药浓度较低,提取时需浓集 传统的浓集方法主要有两种:一种是在
19、末次提取时加入的提取液尽量少,使被测组分提取到小体积溶剂中,然后直接吸出适量供测定。另一种是挥去提取溶剂后,再用少量适合的溶剂溶解后测定。,41,补充几点科研中的心得,(1)乳化问题,(2)在水相中加入中性盐,提高萃取效率,(3)在有机相中加入另一种改性的有机溶剂,提高萃取效果,(4)使用EP管作为提取容器,42,衡量提取方法优劣的一个重要指标就是提取回收率,它是指药物从生物样品中被分离出来用于测定的比例,一般应高于60%,中科院上海药物药检所 药物代谢中心 李川博士说“乙酸乙酯、叔丁基甲基醚可用于80%药物的萃取”,43,液-液回提(多次提取)对于碱、酸性药物,在有机溶剂初次提取后,调节适当
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